問題一、1.在15min內*溶出的藥物需要做溶出曲線嗎？
2.如果參比制劑在0.1mol/l鹽酸中很容易分解，還需要對酸性介質進行研究嘛？做溶出介質的目的主要是選擇的溶出介質還是模擬體內，考察樣品的溶解情況？
3.溶出度研究，做6粒行不行？
謝老師：
(1)需要。但僅做5、10、15和30分鐘即可，因15分鐘和30分鐘已至平臺區。
(2)在測定原料藥在各溶出介質中的溶解度和穩定性時，如發現在某一介質中不穩定，可依據不穩定性程度（即降解速率），酌情考慮測定辦法，如：
立即進樣；
使主成分全部轉變成該“物質”后測定含量，再推導出主成分溶出量（需知兩者的轉換系數）；
通過HPLC法將兩者分離，分別測定。將“轉變物”換算成主成分，仍以主成分計算出溶出量。
(4)測定溶出曲線有很多作用和目的，不僅是為了建立體內外相關性，更為重要的是采用這樣一種手段來“剖析”和“肢解”固體制劑內在品質！
(5)眾多法規上均要求做12粒，是從統計學角度出發，當生產規模達幾十萬片、甚至幾百萬片時的考慮。而就目前國內實際生產情況，無論是在研發階段和質量評估階段皆可采用6片，其測定數據已基本被認為具有代表性了。
問題二、復方制劑，其中一個API為酸性（pKa4.5-6.0），另一個API的pKa6.5-8.5，是分別制粒后壓制成片劑，請問它們應該做哪些溶出介質呢？
謝老師：
(1)首先分別進行兩物質在不同溶出介質的溶解度測定，觀測pH值-溶解度曲線圖在縱坐標4.5~8.0間的情況（是否較為“陡峭”）。
(2)如平坦、采用通常的四種介質進行研究皆可；如陡峭，建議增加“在4.5~8.0間，每隔0.5間隔”的多溶出介質研究，然后根據實際測定情況，擬定質量標準中的溶出介質。
問題三、有個問題請教，看到你寫的“溶出曲線的測定與比較”中關于計算時間點的確定，說調釋制劑溶出率80%以上的時間點應不多于一個，調釋制劑選擇溶出率相近的4-6個時間點計算。也就是說調釋制劑的相關系數f2只有這4-6個時間點就可以，沒有必要取10個或8個時間點，我這樣理解對嗎？
謝老師：
計算f2因子時，n值的貢獻比較大，會出現n值較大，計算結果錯誤地偏高。故日本溶出度試驗指導原則中明確規定n值不得大于6。建議嘗試一下，觀測結果跟n值的關系如何。
問題四、我在做一個水溶性差的藥物的片劑，藥典上規定的溶出條件是：漿法，50轉，0.1mol/LHCl；現在我想做一個原料藥的溶出情況的對照，我采用的是上述條件，然后將適量原料藥直接放入介質中，在不同時間點取樣來繪制溶出曲線。請問通過這樣的試驗能說明原料藥在介質中的溶出情況嗎？能跟我們做出來的片劑做對照嗎？如果不行，應怎樣設計試驗？
謝老師：
采用原料藥做出來的溶出曲線是不能夠與成品制劑進行對比研究的。其測定通常有以下兩種用途：
(1)評價原料藥自身特性對溶出度的影響，如粒徑、晶型、顆粒形狀、比表面能等參數。
(2)評價不同制劑工藝/處方/輔料制成的中間體對于原料藥溶出的改善程度。通過對以上各參數進行優化與篩選來為制劑研發奠定基礎。
問題五、非那雄胺片的溶出度實驗中分別對微孔濾膜0.45um、0.8um規格做了回收實驗，在棄去初濾液10ml后，發現其回收率都低于98%。不符合要求，但是當增加初濾液的體積到25ml時，回收率可以達到98%，但依然存在有一片或者兩片低于此值。當實驗進行到這里的時候，我有點不知所措了！是繼續對不同品規的濾膜做回收，還是改方法取離心沉淀的上清液作樣品液呢？
謝老師：
很高興看到您的提問。關于這一問題的原理我本人撰寫的“溶出度測定中應注意的若干問題”一文中“2.2 過濾時的損失”有詳細論述。此類小規格制劑、由于主成分經微粉化處理后與濾膜間有一個吸附飽和過程，而該過程又會因不同品牌的濾膜有所差異，故即便驗證了不同品牌的濾膜和初濾液棄去的體積數，也不敢保證實際測定時會遇到的各種復雜情況。因此建議采用“離心法處理”。對于該種處理的異議主要是“離心會導致取出液中的樣品繼續溶出的顧慮”，其實此概率存在的可能性是極其微小的，即便存在亦不會給實際測定結果帶來顯著性影響。如欲驗證，可采用不同轉速和離心時間予以明辨，觀測其是否有不斷增加趨勢。介于以上考慮，故質量標準中擬定離心法的品種我在藥檢所看到過很多，故請放心采用！其實有更為“藝高人膽大”的作法：取出后靜置一段時間直接進樣（省略了離心繁瑣步驟）！因為如此小規格制劑，取出后樣品中存在的輔料顆粒堵塞色譜柱的概率亦是極其微小的。我本人自行試驗和在日本學習期間，皆曾如此操作過，幾百針過后皆平安無事，不信一試！
問題六、我在做緩釋片的質量標準。對于方法學驗證中的“范圍”這一項有點疑惑。我對范圍驗證都是做的限度濃度點的回收率試驗，這樣做有時就和“準確度”驗證有部分重合，不知這樣做是否正確？還有一點，對于釋放度的方法學驗證中“范圍”這一項的驗證，方法驗證技術指導原則中說“對于釋放度，如規定限度范圍為，從1小時后為20％至24小時后為90％，則驗證范圍應為0～110％。” 對于下限0％，該采用什么方法進行驗證？我擬采用的方法（1）采用空白片，充分溶解于釋放介質，測定釋放度（理論應為0％），測定六個空白片樣品，報告數據及RSD。或者（2）棄去0％這一點，驗證釋放度10％、60％、110％三個點，每個點做三個不同濃度的式樣，各測定3次，即測定9次，報告已知加入量的回收率（%)。不知這樣考慮是否正確，還是應該采用其他方法。
謝老師：
其中所涉及的均為溶出度測定法的“方法學驗證內容”。我們有時往往把問題復雜化，其實如下簡便操作即可：
(1) 線性試驗：在溶出量為10%~120%間設計5個點（如10%、20%、40%、80%和120%），驗證相關系數大于0.999即可；當然溶出曲線研究時，小溶出量大于10%。
(2) 精密度試驗：將溶出量分別為10%、40%和100%三個濃度溶液，各測定5~6次，計算RSD，皆小于2.0%即可；
(3) 準確度試驗/回收率試驗：取對照品配制成10%、20%、40%、80%和120%五個濃度溶液，其中皆分別加入溶出量為100%時對應的輔料量，測定回收率，平均回收率在98.0%~102.0%即可。
(4)《方法驗證技術指導原則》中所述“對于釋放度，如規定限度范圍為，從1小時后為20％至24小時后為90％，則驗證范圍應為0～110％”，太過于理論化與書本化了，勿“生搬硬套”！
問題七、我們現在研制的一個片劑，主藥不溶于水，也不溶于0.1mol/L的鹽酸溶液。在這兩種介質中溶出度很低，45分鐘達不到30％。而且在水和鹽酸溶液中加入表面活性劑后，溶出度還是很低，那么這種情況下，在水和鹽酸兩種溶出介質中，怎么樣來進行研制產品和原研品種的溶出度比較呢？
謝老師：
建議您詳細閱讀一下本人撰寫的“溶出曲線的測定與比較”一文，測定時間：在酸性介質中2小時、在其他所有介質中6小時。
放寬試驗參數步驟：首先增加轉速至75轉/槳板法或120轉/轉籃法，再增加表面活性劑濃度直至3.0%，如仍未果，再增加轉速至100轉（皆采用槳板法，不再采用轉籃法）。評價標準不是以45分鐘達70%計，而是以連續兩點溶出率均達90%以上、且差值在5%以內時，試驗則可提前結束。
如果質量標準中擬定取樣時間點為60分鐘或90分鐘，甚至120分鐘（日本就有很多品種如此擬定），這實則是要求更高！而我國質量標準絕大部分皆擬定為30分鐘或45分鐘，這是“要求太低的表現”！還望您深入理解為盼！
問題八、我們做的一個片劑，素片做崩解時限16分鐘，按藥典要求，不合格。但是按標準檢查溶出度，30分鐘取樣溶出95%左右。按照藥典規定，做了溶出度檢查的樣品不再進行崩解時限的檢查，是不是可以判定本品合格。
謝老師：
的確有這樣品種：按照質量標準中的溶出度試驗合格，而崩解時限不合格。其實、這個現象是很正常的，只要搞清楚質量標準中何時應擬定崩解時限、何時應擬定溶出度檢查后（請參照本貼中之前的回復以及所上傳的文章內容）即可迎刃而解了……本品*可判定為“合格”！
問題九、關于溶出延遲現象解釋，我有點疑問：
（1） 為什么要對有這種現象的片子進行校正后才能比較呢？不校正就不可以比較嗎？
謝老師：
經查《日本仿制藥生物等效性試驗指導原則——疑難解答》中如此表述：當參比制劑有溶出延遲滯后現象時，不一定必須對溶出曲線采用延遲時間校正后再行比較，直接比較亦是可以的。但前提是仿制制劑與參比制劑的延遲滯后時間差必須在10分鐘以內。
【注】由于日本仿制藥眾多、故日本厚生省藥品管理局陸續出臺了 《仿制藥生物等效性試驗指導原則（主要針對固體制劑、其中有詳盡的溶出度研究方法）》、 《含量規格不同的口服固體制劑生物等效性試驗指導原則》、 《口服固體制劑處方變更（含其他變更）后生物等效性試驗指導原則》、《固體制劑改變劑型后生物等效性試驗指導原則》，以及這些指導原則的《疑難解答》。本人于去年上半年翻譯了以上所有內容的新版（2007年版）、并加入了個人注解與詮釋，共六萬五千字。國家藥監局新藥審評中心內部刊物《藥品審評論壇》于2008年第3期刊登了其中的 《仿制藥生物等效性試驗指導原則》。 “采用延遲時間校正溶出曲線的具體實例”屆時請詳見《仿制藥生物等效性試驗指導原則——疑難解答》部分。
（2）在溶出試驗時，配制難溶性藥物對照品溶解，先用有機溶劑溶解，然后用其它介質定容，是不是只用目測不混濁等就認為*溶解呢？
謝老師：
是的。肉眼觀察，輕微振搖時無任何固體顆粒懸浮、即可。建議勿采用“有機溶劑溶解，再用溶出介質定容”的方式。而是采用：有機溶劑溶解并配制成一個高濃度的濃溶液在一容量瓶內，隨后精密量取適量分別用多種溶出介質稀釋的方式；同時該濃溶液還可放置在冰箱內保存以待其后使用，如此便可做到“事半功倍”！
